蜜臀av性久久久久蜜臀aⅴ麻豆_国产午夜福利短视频在线观看_精品蜜臀AV在线天堂_亚洲欧洲精品成人久久曰影片

　　ELISA試劑盒試驗中每一個過程都尤為重要，細節不容忽視，它是試驗成功的要害與否；在這里為方便各位了解，更好的完結試驗，特對高活絡ELISA試劑盒操作過程中的忌諱做出以下剖析，供大家參考： 　　1、汲取液體時速度不宜太快，避免產生氣泡，汲取的量不夠精確。 　　2、手藝洗板時每次參加洗刷液后。應靜置15～30s，不要將一個酶標孑L中的洗刷液濺入另一酶標孔中，避免穿插污染。甩去洗刷液后將酶標板放在毛巾或吸水紙上拍干。 　　3、底物為TMB，避免與皮膚相接觸。停止液為2tool的濃硫酸具有腐蝕性，應盡量避免接觸皮膚。 　　4、加樣后及時放人孵箱，標本較多時，要分批操作。按闡明過程嚴厲操控操作時刻，避免孵育時刻人為延伸，導致非特異性結合緊附于反應孔周圍，難以清洗完全。 　　5、作時有必要戴手套，穿作業衣，嚴厲健全和執行消毒隔離準則。 　　6、剩下樣品及拋棄物應經121℃高壓蒸汽滅菌30分鐘，或用5.0g/L次氯酸鈉等消毒劑處理30分鐘后拋棄。 　　7、同批號試劑組分不得混用。 　　8、洗刷時各孔均需加滿液體，避免孔口有游離酶不能洗凈。 　　9、每次試驗留一孔作為空白調零孔，該孔不加任何試劑，僅僅zui后加底物溶液及2N H2SO4。測量時先用此孔調OD值至零。 　　10、要確保微量加樣器的精確性，能夠運用蒸餾水和電子天平進行斷定(因為蒸餾水不含雜質，溫度環境為20%左右時，lmL的水能夠看作是lg、200 L的水能夠看作是0.2g)每一把微量加樣器都應該將其zui高量程和zui低量程進行斷定。 　　11、在運用微量加樣器時，汲取不同瓶子中液體后要更換槍頭，即便汲取標準品溶液。 　　12、查驗技師應具有從事試驗室操作的基本素質和實踐經驗。能嫻熟操作試驗儀器、器械，具有必定總結和剖析問題的才干，對試驗中呈現的意外狀況能及時妥善解決。 　　13、操作前仔細閱讀闡明書，嚴厲依照闡明書要求進行規范化操作。不同批號的試劑不行混用。值得改善的地方，重復試驗斷定建立后才干改善，比如洗板次數的把握等。 　　14、評價試劑的實用性，試劑的安穩與否，對精確率的凹凸到頭重要。在試劑啟用前，應進行陰、陽對照及樣品重復對比試驗，斷定試劑符合要求后方可運用。 　　15、加樣要精確、快速。加樣不精確，酶生成物的量不能斷定，直接影響顯色成果。別的，顯色的深淺及A值的測定與參加顯色劑和停止液的量有關，所以加樣應穩重。要求在必定時刻內加樣完畢的試驗，假如加樣緩慢，便呈現差錯，而且試劑長時刻露出在外，特別室溫過高時，保存期會縮短甚至失效。 　　16、運用校對過的微量移液器，掃除天然差錯。移液器精確與否對定量檢測尤為重要 　　17、嚴厲把握顯色時刻，顯色時刻過短，參加停止液反應停止后，底物結合物的量過少，易呈現假陰性。超過顯色要求時刻后顯色，應判為假陽性，這可能與試劑本身有關。加顯色劑后當即顯色，不行報陽性，這可能是本底顯色的成果。 　　18、洗刷完全，洗板不完全，酶結合物本底顯色會呈現假陽性。別的，洗刷液要新鮮，現用現配，陳腐的洗刷液會呈現本底增高現象，也可能呈現假陽性。 　　19、嚴控反應時刻，反應時刻過長，酶失活；反應時刻過短，酶結合物不能與血清中的微生物抗原抗體充沛結合，生成物結構松散不結實，簡單洗掉，都可能形成假陰性。 　　20、ELISA檢測操作過程雜亂，可強各環節的質量操控，才干得到精確可靠的檢測成果。

　　醫藥行業是有著很嚴厲的要求，不能呈現過失。ELISA試劑盒的要求也不低，需求我們引起重視。而ELISA試劑盒試驗都有哪些技巧？ 　　防止血清沉淀物的發生有五個小辦法： 　　1、凍結血清時，隨時將之搖晃均勻，使溫度及成分均一； 　　2、血清的熱滅活十分簡單造成沉淀物的增多，若非必要，能夠無須做此過程； 　　3、若必須做血清的熱滅活，請恪守56攝氏度，30分鐘的準則，而且隨時搖晃均勻； 　　4、凍結血清時，請依照所主張的逐漸凍結法； 　　5、請勿將血清置于37攝氏度太久，會變得混濁。 　　ELISA試劑盒試驗加樣時的防錯技巧有這三點： 　　1、用一張寫滿字的紙，字越多越好，比方報紙，墊在下面，這樣，加過標本的小孔看過去下面的字會變小，沒加的字正常，十分簡單差異。 　　3、在標本加完后，再把加樣槍全壓下，使液面發生小氣泡，能夠差異。 　　2、人胰多肽(PP)ELISA 試劑盒能夠使用液面反光與沒有加的孔加以差異。

　　elisa試劑盒是有著極端嚴厲的要求，不能呈現過失。所以人們對elisa試劑盒的檢測必定要注意，沒有人希望呈現問題。那elisa試劑盒檢測有哪些方法？ 　　一、直接法 　　將抗原直接固定在固相載體上，參與酶符號的一級抗體，即可測定抗原總量，此一級抗體的特異性非常重要。 　　1. 優勢：操作手續簡略，因無須運用二抗可防止交互反應。 　　2. 缺點：試驗中的一抗都得用酶符號，但不是每種抗體都適合做符號，費用相對前進。 　　二、間接法 　　此測定方法與直接法類似，不相同在于一級抗體沒有酶符號，改用酶符號的二級抗體去辨識一級抗體來測定抗原量。 　　1. 優勢：二抗可以加強信號，而且有多種挑選能做不相同的測定剖析。不加酶符號的一級抗體則能保存它zui多的免疫反應性。 　　2. 缺點：交互反應發生的機率較高。 　　三、雙抗體夾心法 　　被檢測的抗原包被在兩個抗體之間，其間一個抗體將抗原固定于固相載體上，即捕捉抗體。另一個則是檢測抗體，此抗體可用酶符號后直接測定抗原的量；或不符號，再透過酶符的二級抗體來測定抗原的量。這兩種抗體有必要留神挑選，才可防止交互反應或競賽相同的抗原聯絡部位。 　　1. 優勢：高活絡、高專一性，抗原無須事前純化。 　　2. 缺點：抗原必定得具有兩個以上的抗體聯絡部位。 　　四、競賽法 　　樣本里的抗原（安閑抗原）和純化并固定在固相載體上的抗原（固定抗原）一起競賽相同的抗體，當樣品里的安閑抗原越多，就可以聯絡越多的抗體，而固定抗原就只能聯絡到較少的抗體，反之亦然。經清潔進程，洗去安閑抗原和抗體的復合物，只留下固定抗原和抗體的復合物，拿來與只需固定抗原的對照組效果相比較，依據呈色差異就可計算出樣品里的抗原含量。 　　1. 優勢：可適用比較不純的樣本，而且數據再現性很高。 　　2. 缺點：整體的敏感性和專一性都較差。 　　五、依據細胞法 　　是一種新的定性蛋白檢測技能，將細胞直接在微孔板里培育，待檢測時，不需抽提蛋白和裂解細胞，便可直接測量微孔板里蛋白經影響或抑制作用后的改動。 　　1. 優勢：無需裂解細胞，所以政策蛋白丟掉少，可測定無缺細胞、黏附細胞、還有非粘附細胞。 　　2. 缺點：不能測定抗原量。

　　ELISA試劑盒注意事項： 　　1．ELISA試劑盒從冷藏環境中取出應在室溫平衡15-30分鐘后方可運用，酶標包被板開封后如未用完，板條應裝入密封袋中保存。 　　2．濃洗滌液可能會有結晶分出，稀釋時可在水浴中加溫助溶，洗滌時不影響成果。 　　3．各步加樣均應運用加樣器，并常常校正其準確性，以避免試驗誤差。一次加樣時刻**控制在5分鐘內，如標本數量多，引薦運用排槍加樣。 　　4．請每次測定的一起做規范曲線，**做復孔。如標本中待測物質含量過高（樣本OD值大于規范品孔榜首孔的OD值），請先用樣品稀釋液稀釋一定倍數（n倍）后再測定，計算時請＊終乘以總稀釋倍數（×n×5）。 　　5．封板膜只限一次性運用，以避免交叉污染。 　　6．底物請避光保存。 　　7．嚴格依照說明書的操作進行，試驗成果斷定有必要以酶標儀讀數為準. 　　8．一切樣品，洗滌液和各種廢棄物都應按感染物處理。 　　9．本試劑不同批號組分不得混用。 　　10.如與英文說明書有異，以英文說明書為準。

 1. 如何選用特殊細胞系培養基？ 培養某一類型細胞沒有固定的培養條件。在MEM中培養的細胞，很可能在DMEM或M199中同樣很容易生長。總之，**MEM做粘附細胞培養、RPMI-1640做懸浮細胞培養是一個好的開始。2. 何時須更換培養基？視細胞生長密度而定，或遵照細胞株基本數據上的更換時間，按時更換培養基即可。 3. 可否使用與原先培養條件不同的培養基？  不能。每一細胞株均有其特定使用且已適應的細胞培養基，若驟然使用和原先提供的培養條件不同的培養基，細胞大都無法立即適應，造成細胞無法存活。 4. 可否使用與原先培養條件不同的血清種類？不能。血清是細胞培養上一個極為重要的營養來源，所以血清的種類和品質對于細胞的生長會產生極大的影響。來自不同物種的血清，，在一些物質或分子的量或內容物上都有所不同，血清使用錯誤常會造成細胞無法存活。 5. 何謂FBS, FCS, CS, HS ?FBS (fetal bovine serum) 和FCS (fetal calf serum) 是相同的意思，兩者都是指胎牛血清，乃錯誤的使用字眼，請不要再使用。CS (calf serum) 則是指小牛血清。HS (horseserum) 則是指馬血清。 6. 培養細胞時應使用5% 或10% CO2？或根本沒有影響？一般培養基中大都使用HCO3-/CO3 2-/H+ 作為pH 的緩沖系統，而培養基中NaHCO3 的含量將決定細胞培養時應使用的CO2 濃度。當培養基中NaHCO3 含量為每公升3.7 g 時，細胞培養時應使用10% CO2；當培養基中NaHCO3 為每公升1.5 g 時，則應使用5% CO2 培養細胞。 7.Hank's 平衡鹽溶液(HBS)要在空氣中使用，不需要CO2培養箱。原因是什么？Hank's 平衡鹽溶液(HBS)和Earle's平衡鹽溶液(EBS)有什么本質的功能差別？HBS和EBS 的主要差別在于碳酸氫鈉的水平，在Eagles (2.2 g/L)中比在Hanks (0.35 g/L) 中高。碳酸氫鈉需用高水平的CO2平衡，以維持溶液的PH值。Eagles液在空氣水平的CO2 中，溶液會變堿，Hanks液在CO2培養箱中會變酸。如果希望在CO2培養箱中保存組織，需要用Eagles液，如果僅僅是清洗將要在細胞培養基中儲存的組織，用Hanks液就可以了。 8. 什么是細胞的接種密度？依照細胞株基本數據上的接種密度或稀釋分盤的比例接種即可。細胞數太少或稀釋的太多亦是造成細胞無法生長之一重要原因。 9. 懸浮性細胞應如何繼代處理？一般僅需持續加入新鮮培養基于原培養角瓶中，稀釋細胞濃度即可，若培養液太多時，可將培養角瓶口端稍微抬高，直到無法容納為止。分瓶時取出一部份含細胞的培養液至另一新的培養角瓶，加入新鮮培養基稀釋至適當濃度，重復前述步驟即可。 10. 冷凍管應如何解凍？ 取出冷凍管后，須立即放入37℃水槽中快速解凍，輕搖冷凍管使其在1 分鐘內全部融化，并注意水面不可超過冷凍管蓋沿，否則易發生污染情形。另冷凍管由液氮桶中取出解凍時，必須注意安全，預防冷凍管之爆裂。 11. 細胞冷凍管解凍培養時， 是否應馬上去除DMSO？除少數特別注明對DMSO 敏感的細胞外，絕大部分細胞株(包括懸浮性細胞)，在解凍之后，應直接放入含有10-15 ml新鮮培養基的培養角瓶中，待隔天再置換新鮮培養基以去除DMSO 即可，如此可避免大部分解凍后細胞無法生長或貼附的問題。 12. 附著性細胞繼代時所使用的trypsin-EDTA 濃度？應如何處理？一般使用的trypsin-EDTA 濃度為0.05% trypsin-0.53 mM EDTA Na4。 第一次開瓶后應立即少量分裝于無菌試管中，保存于-20 ℃，避免反復冷凍解凍造成trypsin 的活性降低，并可減少污染的機會。 13. 欲將一般動物細胞離心下來，其離心速率應為多少轉速？回收動物細胞，其離心速率一般為300xg (約1 000 rpm)，5-10 分鐘，過高的轉速，將造成細胞死亡。 14. 細胞冷凍培養基的成份為何？動物細胞冷凍保存時*常使用的冷凍培養基是含5-10% DMSO (dimethyl sulfoxide) 和90-95% 原來細胞生長用的新鮮培養基均勻混合之。注意：由于DMSO 稀釋時會放出大量熱能，故不可將DMSO 直接加入細胞液中，必須使用前先行配制完成。 15. DMSO 的等級和無菌過濾的方式為何？冷凍保存使用的DMSO 等級，必須為Tissue culture grade之DMSO (如Sigma D2650)，其本身即為無菌狀況，第一次開瓶后應立即少量分裝于無菌試管中，保存于4℃，避免反復冷凍解凍造成DMSO 的裂解而釋出有害物質，并可減少污染的機會。若要過濾DMSO，則須使用耐DMSO 的Nylon 材質濾膜。 16. 冷凍保存細胞的方法？冷凍保存方法一：冷凍管置于4℃ 30~60 分鐘→ (-20℃ 30 分鐘*) → -80℃16~18 小時(或隔夜) → 液氮槽vaporphase 長期儲存。冷凍保存方法二：冷凍管置于已設定程序的可程序降溫機中每分鐘降1-3 ℃至-80℃以下，再放入液氮槽vapor phase長期儲存。*-20℃不可超過1 小時，以防止冰晶過大，造成細胞大量死亡，亦可跳過此步驟，接放入-80℃冰箱中，惟存活率稍微 降低一些。 17. 細胞欲冷凍保存時， 細胞冷凍管內應有多少細胞濃度？冷凍管內細胞數目一般為1x106 cells/ml vial，融合瘤細胞則以5x106 cells/ml vial 為宜。  18.培養基中是否須添加抗生素？ 除于特殊篩選系統中外，一般正常培養狀態下，培養基中不應添加任何抗生素。 19. 應如何避免細胞污染？細胞污染的種類可分成細菌、酵母菌、霉菌、病毒和霉漿菌。主要的污染原因為無菌操作技術不當、操作室環境不佳、污染的血清和污染的細胞等。嚴格的無菌操作技術、清潔的環境、與品質良好的細胞來源和培養基配制是減低污染的**方法。當然，適當添加抗生素也是防止細胞污染的途徑，Invivogen公司就能提供多種細胞抗生素類產品： Primocin?——原代細胞抗生素 Primocin?是專門設計用于保護原代細胞免受微生物污染的抗生素，對革蘭氏陽性菌、革蘭氏陰性菌、支原體和真菌均有殺傷作用。Primocin?對原代細胞沒有毒性，因為其作用的靶標只存在于微生物上。其中細菌的靶標為DNA解旋酶和原核細胞核糖體亞基30S和50S；真菌的靶標為麥角固醇（一種只發現于真菌和酵母細胞膜的分子）。Primocin?的推薦使用濃度為100 mg/ml,無需添加青霉素/鏈霉素。 產品名稱 規格 產品編號 Primocin? 500 mg (10 x 1 ml) ant-pm-1 1 g (1 x 20 ml) ant-pm-2Normocin?——細菌、真菌、支原體多效抗生素Normocin?具有抗細菌、真菌、支原體三種微生物的作用，其包含兩種成分可通過阻斷DNA復制和蛋白合成來殺滅細菌和支原體。第三種成分通過干擾細胞膜離子交換來清除酵母和真菌。Normocin?推薦使用濃度為100 mg/ml，該濃度對細胞沒有毒性。此外，如果與青霉素/鏈霉素合用，可以增加抗菌譜。 產品名稱 規格 產品編號  Normocin? 500 mg (10 x 1 ml) ant-nr-1 1 g (1 x 20 ml) ant-nr-2Fungin?——真菌特異性抗生素Fungin?是Pimaricin（匹馬菌素）的可溶性形式，Pimaricin是十九世紀五十年代發現的多烯抗真菌試劑，可通過干擾細胞膜離子交換的方式殺滅酵母、霉菌和真菌。Fungin?十分穩定，在37°C放置6天仍具有活性。與Amphotericin B（兩性霉素B）需要溶于有毒的脫氧膽酸鹽不同，Fungin?是水溶性的，對細胞無毒性，并且不會影響細胞代謝，推薦使用濃度為10 mg/ml - 50 mg/ml。  產品名稱 規格 產品編號 Fungin?  75 mg (5 x 1.5 ml) ant-fn-1 200 mg (1 x 20 ml) ant-fn-220. 如果細胞發生微生物污染時，應如何處理？原則上：直接滅菌后丟棄之。當重要的培養污染時，研究者可能試圖消除或控制污染。首先，確定污染物是細菌、真菌、支原體或酵母，把污染細胞與其它細胞系隔離開，用實驗室消毒劑消毒培養器皿和超凈臺，檢查HEPA過濾器。高濃度的抗生素和抗霉菌素可能對一些細胞系有毒性，因而，做劑量反應實驗確定抗生素和抗霉菌素產生毒性的劑量水平。這點在使用抗生素如兩性霉素B和抗霉菌素如泰樂菌素時尤其重要。下面是推薦的確定毒性水平和消除培養污染的實驗步驟。(1)  在無抗生素的培養基中消化、計數和稀釋細胞，稀釋到常規細胞傳代的濃度。(2)  分散細胞懸液到多孔培養板中，或幾個小培養瓶中。在一個濃度梯度范圍內，把選擇抗生素加入到每一個孔中。例如，兩性霉素B推薦下列濃度，0.25，0.50，1.0，2.0，4.0，8.0 mg/ml。(3)  每天觀測細胞毒性指標，如脫落，出現空泡，匯合度下降和變圓。(4)  確定抗生素毒性水平后，使用低于毒性濃度2～3倍濃度的抗生素的培養液培養細胞2～3代。(5)  在無抗生素的培養基中培養細胞一代。(6)  重復步驟4。(7)  在無抗生素的培養基中培養4～6代，確定污染是否以已被消除。 21. 支原體(mycoplasma) 污染的細胞， 是否能以肉眼觀察出異狀？不能。除極有經驗之專家外，大多數遭受支原體污染的細胞株，無法以其外觀分辨之。 22. 支原體污染會對細胞培養有何影響？支原體污染幾乎可影響所有細胞的生長參數，代謝及研究的任一數據。故進行實驗前，必須確認細胞為mycoplasma-free，實驗結果的數據方有意義。 23. 偵測出細胞株有支原體污染時， 該如何處理？直接滅菌后丟棄，以避免污染其它細胞株，但是如果您的樣本珍貴，建議您使用支原體去除試劑去除污染 Plasmocin?——支原體預防與去除利器Plasmocin?是目前全球*受科研工作者歡迎的支原體抗生素之一。其包含大環內酯物及對苯二酚兩種主要成分，可有效作用于支原體復制的蛋白合成階段和DNA復制階段，只需兩周即可清除支原體污染，并且不會影響細胞本身代謝；其特有的轉運載體可以將有效成分轉運到細胞內，故對胞內支原體和胞外游離的支原體都十分有效。此外，低濃度的Plasmocin?對多種革蘭氏陽性菌和革蘭氏陰性菌也有一定的清除作用。 Plasmocin? Treatment (ant-mpt)用于清除支原體污染，使用濃度為25 ug/ml,2周即可徹底清除支原體。Plasmocin? Prophylactic (ant-mpp)用于預防支原體污染，定期添加于細胞培養基中，使用濃度為2.5 - 5 ug/ml。 產品名稱 規格 產品編號 Plasmocin? treatment 50 mg (2 x 1 ml) ant-mpt Plasmocin? prophylactic 25 mg (10 x 1 ml) ant-mppPlasmocure?——強力清除具有Plasmocin?抗性的支原體據報道在極少數情況下，有些支原體對Plasmocin? 具有抗性。基于此，InvivoGen又開發了第二款支原體抗生素Plasmocure?。Plasmocure?采用不同于Plasmocin?作用機制的兩種抗生素來殺滅支原體，處理兩周時間即可徹底清除這些頑固支原體。在處理過程中有輕度的細胞毒性，但支原體清除后細胞系可完全恢復。Plasmocure?推薦使用濃度為50 mg/ml。 產品名稱 規格 產品編號 Plasmocure? 100 mg (1 x 1 ml) ant-pc24. CO2 培養箱的水盤如何保持清潔？定期(至少每兩周一次) 以無菌蒸餾水或無菌去離子水更換之。 25. 為何培養基保存于4℃ 冰箱中， 顏色會偏暗紅色，且pH值會越來越偏堿性？培養基保存于4℃冰箱中，培養基內的CO2會逐漸溢出，造成培養基越來越偏堿性。而培養基中的酸堿指示劑(通常為phenol red) 的顏色也會隨堿性增加而更偏暗紅。培養基偏堿的結果，將造成細胞生長停滯或死亡。若培養基偏堿時，可以通入無菌過濾的CO2， 以調整pH 值。 26. 各種細胞培養用的dish，flask是否均相同？不同廠牌的dish 或flask，其所coating 的polymer 不同，制造程序亦不同，雖對大部分細胞沒有太大之影響，惟少數細胞則可能因使用廠牌不同的dish 或flask 而有顯著的生長差異。 27. 購買的細胞冷凍管經解凍后，為何會發生細胞數目太少的情形？研究人員在冷凍細胞的培養時出現細胞數目太少，大都是因為離心過程操作上的失誤，造成細胞的物理性損傷，以及細胞流失。建議細胞解凍后不要立刻離心，應待細胞生長隔夜后再更換培養基即可。 28. 購買的細胞死亡或細胞存活率不佳可能原因？研究人員在細胞培養時出現存活率不佳，常見原因可歸納為：培養基使用錯誤或培養基品質不佳。血清使用錯誤或血清的品質不佳。解凍過程錯誤。冷凍細胞解凍后，加以洗滌細胞和離心。懸浮細胞誤認為死細胞。培養溫度使用錯誤。細胞置于-80℃太久。 29. 如何避免沉淀物的產生?我們建議您在使用血清的時候，注意下列的操作:(1)  解凍血清時，請按照所建議的逐步解凍法(-20℃至4℃至室溫)，若血清解凍時改變的溫度太大(如-20℃至37℃)，非常容易產生沉淀物。(2)  解凍血清時，請隨時將之搖晃均勻，使溫度及成分均一，減少沉淀的發生。(3)  請勿將血清置于37℃太久。若在37℃放置太久，血清會變得混濁，同時血清中許多較不穩定的成分也會因此受到損害，而影響血清的質量。(4)  血清的熱滅活非常容易造成沉淀物的增多，若非必要，可以無須做此步驟。(5)  若必須做血清的熱滅活，請遵守56℃，30分鐘的原則，并且隨時搖晃均勻。溫度過高，時間過久或搖晃不均勻，都會造成沉淀物的增多。 30.  L-谷氨酰胺在細胞培養中重要嗎？它在溶液中不穩定嗎？L-谷氨酰胺在細胞培養時是重要的。脫掉氨基后，L-谷氨酰胺可作為培養細胞的能量來源、參與蛋白質的合成和核酸代謝。L-谷氨酰胺在溶液中經過一段時間后會降解，但是確切的降解率一直沒有*終定論。L-谷氨酰胺的降解導致氨的形成，而氨對于一些細胞具有毒性。 31.  GlutaMAX-I是什么？培養細胞如何利用GlutaMAX-I？這個二肽有多穩定？GlutaMAX-I 二肽是一個L-谷氨酰胺的衍生物，其不穩定的alpha-氨基用L-丙氨酸來保護。一種肽酶逐漸裂解二肽，釋放L-谷氨酰胺供利用。GlutaMAX-I二肽非常穩定，即使在121℃滅菌20分鐘，GlutaMAX-I 二肽溶液有*小的降解，如果在相同條件下，L-谷氨酰胺幾乎完全降解。 32. 什么培養基中可以省去加酚紅？酚紅在培養基中用作PH值的指示劑：中性時為紅色，酸性時為黃色，堿性時為紫色。研究表明，酚紅可以模擬固醇類激素的作用，（特別是雌激素）。為避免固醇類反應，培養細胞，尤其是哺乳類細胞時，不用加。